A. D. McEwan and E. W. 1970; D. F. Wolfe, 1985; Ю. Н. Федоров, О. А.

Верховский, 1996].

В течение двух часов после приема молозива иммуноглобулины появляются в

сыворотке и, через четыре-восемь часов — в синовии. Иммуноглобулиновый

профиль синовии имеет сходство с сывороткой крови телят и коров-матерей [H.

Fey, 1972]. Это объясняет, почему телята, получившие молозиво более

резистентные к септицемии и полиартритам, чем телята, которые недостаточно

получают молозиво.

Молозиво превосходный источник энергии, протеина, витаминов А, Д и

комплекса витаминов В, а также кальция, фосфора, магния и хлоридов. При

дефиците указанных компонентов молозива и, особенно, витамина А

резистентность к Е. coli инфекции резко снижается. [Th. Smith and R. B.

Little, 1922; H. Fey und S. Lindt, 1982; С. С. Gay, 1984; J. J. Geene,

1984; R. Morar, 1985; P.E. Howe, 1991]

Молозиво коров содержит высокий уровень иммуноглобулинов, среди которых

75 % IgG, IgA и IgM вместе составляют около 20 % от иммуноглобулинов

молозива [J. A. Roth, J. W. Sexton, 1975].

По данным исследователей [E. W. Fisher, 1971; J. W. Boyd, 1972; E. W.

Fisher, A. A. Martinez, Z. Trainin, 1975], риск заболеваемости и

летальности можно предсказать у телят 48 ч возраста при определении уровня

сывороточных иммуноглобулинов. Новорожденные телята с уровнем IgG и IgM

меньше чем 0,8 и 0,2 мг/мл соответственно, погибали от неонатальной

септицемии, тогда как у телят с уровнем IgG и IgM 5,0 и 0,6 мг/мл

соответственно, развивалась энтеральная инфекция. Телята с

постколостральным сывороточным уровнем 7,5 и 0,8 мг/мл IgG и IgM

соответственно, были нормальными (клинически здоровы). Следовательно,

телята с умеренно низким уровнем иммуноглобулинов имели достаточный

иммунитет, предупреждающий септицемию, но не профилактировали энтерит.

Многочисленные исследования показывают, что имеется корреляция между

пассивно приобретенными сывороточными иммуноглобулинами и выживанием

неонатальных телят [H. Fey, 1967; H. Fey, 1968; E. F. Logan, A. Stenhouse,

D. J. Ormorod and W. J. Penhale, 1974; T. A. Ferris, J. W. Thomas,1975; R.

K. Braun, B.C. Tennant, 1983; P. Dobbelaar, I. P. T. M. Noordhuizen and K.

Van A. S. Keulen, 1987; A. Lacheretz, J. Chontol, P. Desmettre, 1987].

Определение уровня сывороточного иммуноглобулина у новорожденных

является клинически важным, так как их количество оказывает влияние на

восприимчивость телят к заболеванию. Иммуноглобулиновые фракции составляют

примерно одну третью значения общего сывороточного протеина. Иммуноглобулин

дефицитные телята имеют низкое значение общего протеина, на это указывают

показания рефрактометра. Рефрактометр не дает прямое измерение

сывороточного иммуноглобулина подобно цинк-сульфатному, натрий-сульфитному

и глутаральдегидному тестам, но предусматривает быстрый подсчет уровня

сывороточного иммуноглобулина и может легко применяться в практической

ветеринарии [D. G. McBeath, W. J. Penhale, E. F. Logan,1971; A. D. Me Ewan,

E. W. Fisher, I. E. Selman and W. J. Penhale, 1970; N. E. Pfeiffer, T. C.

McGuire, 1977; N. E. Pfeiffer, T. C. McGuire, R. E. Bendel and J. M Weikel,

1977; B. Tennant, B.H. Baldwin, 1979; H. Frerking, von E. Henkel and E.

Schwartz, 1980; H. Balbierz, M. Nicolaijczuk, J. Zeilinski, 1983]

Объем сыворотки необходимый для рефрактометрического теста очень

незначительный (примерно 0,2-0,3 мл) и если доступно центрифугирование,

оценку концентрации иммуноглобулина, соответствующую требованиям, можно

получить в пределах 30 мин из исследуемых проб. Рефрактометрический тест,

как а другие (цинк-сульфатный, натрий-сульфитный, глутаральдегидный)

зависят от гемоконцентрации и имеет незначительное значение при определении

иммуноглобулинового статуса дегидратированных (обезвоженных) телят [D. G.

McBeath, W. J. Penhale, E. F. Logan,1971; Ю. Н. Федоров, 1988].

Рефрактометр позволяет определить иммуноглобулиновый статус неонатальных

телят с различной степенью риска. Норма этой оценки для телят голштинской

породы крупного рогатого скота (молочного направления) следующая:

1. Высокий риск заболеваемости и летальности отмечают при уровне общего

сывороточного протеина 4,9 г/100 мл;

2. Средний риск — при уровне общего сывороточного протеина 5,0-5,4

г/100 мл.

3. Низкий риск — при уровне общего сывороточного протеина 5,5-6,9 г/100

мл. [D. G. McBeath, W. J. Penhale, E. F. Logan,1971; R.K. Braun,

B.C. Tennant, 1983]

Для изучения корреляции у крупного рогатого скота между пассивно

приобретенными антителами и инфекционными заболеваниями были проведены

многочисленные исследования, применяя метод количественного определения

иммуноглобулинов [A. D. Me Ewan, E. W. Fisher, I. E. Selman, 1970; J. W.

Boyd, 1972; W. J. Penhale, E. F. Logan, I. E. Selman, E. W Fisher, 1973; E.

F. Logan, A. Stenhouse, D. J. Ormorod and W. J. Penhale, 1974; G. H. Stott

and E. J. Reinhard, 1978; G. G. B. Klaus, A. Bennett and E. W. Jones, 1979;

G. H. Stott, D. В. Marx, В. E. Menefel, and G. T. Nightengale, 1979; N. H.

Teng, H. S. Kaplan, J. M. Herbert, 1985].

Наиболее широко применяются метод прямой радиальной иммунодиффузии [N.

E. Pfeiffer, T. C. McGuire, 1977; В. М. Чекишев, 1977; N. E. Pfeiffer, T.

C. McGuire, R. E. Bendel and J. M Weikel, 1977; А. А. Тихомиров, 1997] и

цинк-сульфатный тест помутнения [A. D. Mс Ewan, E. W. Fisher, I. E. Selman

and W. J. Penhale, 1970; Н. С. Жосан, 1989].

Наиболее точный и простой метод для тестирования уровня

иммуноглобулинов, применяемый на ферме или в научной лаборатории является

натрий-сульфитный преципитационный тест. Натрий сульфит в соответствующей

концентрации (14, 16, 18 %) вызывает преципитацию иммуноглобулинов, подобно

тому как и цинк-сульфатный тест. Значение помутнения, вызываемого

взаимодействием натрия сульфита и иммуноглобулинов пропорционально степени

защиты телят [N. E. Pfeiffer, T. C. McGuire, 1977; N. E. Pfeiffer, T. C.

McGuire, R. E. Bendel and J. M Weikel, 1977; T.C. McGuire, D.S. Adams,

1982; Ю. Н. Федоров, 1988].

Для выявления гипогаммаглобулинемии у неонатальных телят применяют также

быстрый скрининг тест. Тест основан на коагуляции иммуноглобулинов

глутаральдегидом в 10 % концентрации. Иммуноглобулиновая концентрация у

исследуемых телят, данным методом, была классифицирована как высокая 6

мг/мл, промежуточная 4,1-6 мг/мл и низкая 4 мг/мл [B. Tennant, B.H.

Baldwin, 1979].

1.3. Неспецифическая иммунологическая реактивность новорожденных телят

Результаты многолетних исследований состояния неспецифической

иммунологической реактивности организма сельскохозяйственных животных

свидетельствует о том, что защитные силы их являются динамичным показателем

и определяются как генетическими особенностями организма, так и

воздействием различных факторов окружающей среды. Неблагоприятное

воздействие окружающей среды приводит к ослаблению устойчивости организма

и, как правило, к возникновению и распространению различных заболеваний, в

том числе и инфекционных. Организм животных в процессе внутриутробного

развития продуцирует клетки, осуществляющие фагоцитоз и молекулы с

выраженным противомикробным действием — лизоцим, комплемент, пропердин,

иммунные глобулины и другие факторы естественной резистентности. С

возрастом животных они динамически изменяются [С. J. Howard, A. A. Glynn,

1971; В. В. Никольский, В. П. Литвин, 1974; П. А. Емельяненко, 1979; В. Т.

Сидоров, 1984; B. C. Шипилов, В. К. Копытин, 1984; R.M. Miller, A.J.

Guidry, M.J. Poape, 1988; G. Mulcahy, P.J. Gunn, 1988; С. И. Плященко,

1991].

Иммунологическая реактивность у новорожденных телят формируется

постепенно и достигает полноценной выраженности только на определенном

уровне их индивидуального физиологического развития [B. C. Бузлама, С. М.

Сулейманов, В. Н. Долгополов, Н. Н. Коновалов, М. Н. Рецкий, И. С.

Толкачев, Т. И. Агеева, 1978].

В качестве критериев степени реактивности животного организма используют

[В. В. Никольский, В. П. Литвин, 1974]: динамику накопления антител,

колебание бактерицидной активности крови, опсоно-фагоцитарную реакцию,

специальную внутрикожную пробу и картину крови. В течение первых 10-15 дней

жизни у телят более выражена клеточная защитная функция организма,

характеризующаяся активным фагоцитозом микроорганизмов. Так, опсоно-

фагоцитарный показатель по отношению к кишечной палочке в первые 10-15 дней

жизни равнялся 8, в 30-40 дней — 3,7 а в 60-70 дней — 1,4. Сходные

результаты получены при изучении гуморальных защитных факторов организма.

Фагоцитарная способность лейкоцитов в крови играет большую роль в

противомикробной защите новорожденного теленка. По данным исследователей,

фагоцитарная активность гранулоцитов крови новорожденных телят до выпойки

молозива летом (июнь-июль) достигает 98-100 % (у матерей 90-95 %).

Фагоцитарное число (8-16) несколько ниже, чем в крови коров-матерей (16-

19). Активность лизоцима по лизису тест-микроба в агаровом геле определяли

в сыворотке крови телят и молозиве коров-матерей. Количество лизоцима в 5

первых порциях молозива равно 13±0,26 мкг/мл, в сыворотке крови

новорожденных телят до выпойки молозива — 12±0,69, на 10-й день — 13,4±0,61

и в 3 месяца — 12,5±0,017. Таким образом, авторы не установили различий в

содержании лизоцима в сыворотке крови телят в разных возрастных периодах

[С. Н. Преображенский, Н. И. Блинов, Н. В. Ершова, Г. В. Вышинский, 1974].

В университете штата Оклахома, национальной лаборатории по изучению

болезней животных в США и Гуэлфском университете Канада [O. Barta, V.

Barta, 1972] на плодах и новорожденных телятах определяли бактерицидную

активность крови. Двукратно разведенную сыворотку крови, в объеме 0,2 мл

смешивали с равным объемом взвеси культуры содержащей 104 мл клеток

бактерий кишечной палочки. Смесь выдерживали час при температуре 37° С и

0,1 мл ее высевали на плотную среду. Посевы выдерживали 16-18 ч при 37° С,

подсчитывали число колоний и определяли дозу сыворотки, задерживающую рост

50 % бактерий. Антитела определяли по реакции агглютинации и пассивной

гемагглютинации. Бактерицидная активность сыворотки крови составляла

соответственно (в 1 мл сыворотки, задерживающей рост 50 %) бактерий у

новорожденных телят 0,0036 и 0,0068.

При изучении иммунологической неспецифической реактивности организма

новорожденных телят, [П. А. Емельяненко, 1979] определял фагоцитарную

активность нейтрофилов и моноцитов крови, а также содержание в ее сыворотке

лизоцима, комплемента и пропердина. Он установил, что у погибших телят от

острых желудочно-кишечных болезней достоверно снижался процент фагоцитоза

нейтрофилов, незначительно снижался уровень комплемента, пропердина и

лизоцима.

При иммунобиологическом исследовании крови и сыворотки крови определяют

[Д. Келмен, 1967; В. Я. Мозгис, 1982]:

a) фагоцитоз лейкоцитов по отношению к золотистому стафилококку 209р;

b) бактерицидную активность (БАСК);

c) активность бета-лизинов (БЛСК) сыворотки крови методом

фотонефелометрии. Сущность метода заключается в том, что микробы (в

данном случае, изолированный от телят штамм кишечной палочки —

штамм 83) в течение 5 и 14 ч соответственно подвергаются

воздействию исследуемой сыворотки. Чем слабее бактерицидная и

бетализиновая активность сыворотки, тем интенсивнее размножаются

микробы и тем более мутной становится взвесь;

d) лизоцимную активность сыворотки крови.

При круглогодовом стойловом содержании коров наступает угнетение

иммунологической реактивности, а родившиеся от них телята имеют пониженный

уровень гуморальных и клеточных факторов защиты организма (бактерицидная и

лизоцимная активность сыворотки крови, фагоцитоз, уровень иммуноглобулинов,

по сравнению с телятами, родившихся от коров, пользовавшихся выгулами и

пастбищами [С. И. Плященко, В. Т. Сидоров, А. Ф. Трофимов, 1990].

Все новорожденные до приема молозива обладали достаточно выраженной

Страницы: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16